protein-database

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    好的。让我先解释一下事情。我在这段代码中使用了一个名为Biopython的特定模块。如果您不习惯使用模块,我正在解释解决问题的必要细节。 的代码是: #!/usr/bin/python from Bio.PDB.PDBParser import PDBParser import numpy as np parser=PDBParser(PERMISSIVE=1) structure

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    我想通过Python从Moonlighting Protein Database(www.moonlightingproteins.org/results.php?search_text=)中提取含有氨基酸序列的FASTA文件,因为它是一个迭代过程,我宁愿学习如何编程,而不是手动完成,B/C来吧,我们在2016年。问题是我不知道如何编写代码,因为我是一个菜鸟程序员:(。基本的伪代码将是:提前 fo

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    我正在使用蛋白质数据库中的文件,它看起来像这样。 SITE 2 AC1 15 ASN A 306 LEU A 309 ILE A 310 PHE A 313 SITE 3 AC1 15 ARG A 316 LEU A 326 ALA A 327 ILE A 345 SITE 4 AC1 15 CYS A 432 HIS A 435 HOH A 504

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    我有一个蛋白质网络加载到cytoscape。 我想将网络节点变成与蛋白质形状/结构相对应的形状。 这样就可以将网络图像叠加到蛋白质结构图像上。 我试过RINanalyzer和structureviz2,但没有帮助。任何解决方案

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    我一直在研究蛋白质二级结构预测项目。我无法在线找到RS 126数据集。我在该数据库中找到了一个蛋白质列表。我对它们和* .mat(MATLAB数据集)格式运行PSI BLAST搜索后寻找相同的蛋白质。 谢谢!

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    我有一个小问题... 我知道,对于使用BioJava下载一个PDB结构,我应该使用 Structure s = StructureIO.getStructure("code"); 我应该怎么做用MMCIF文件呢?

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    我试图通过一个.pdb文件,计算来自蛋白质复合物的A和B链上不同残基的α碳原子之间的距离,然后将距离与字典一起存储链标识符和残基编号。例如,如果在链A上的残基100上发现第一个α碳(“CA”),并且它与链上的残基123上的链结合,那么会希望我的字典看起来像d = {( A,100):[B,123,distance_between_atoms]} from Bio.PDB.PDBParser imp

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    我试图找出属于两个不同链的两个原子是否会被视为“绑定”。这基于这样一个事实,即如果距离(通过给定的x,y,z坐标可以找到的euclidian)短于两个原子的范德瓦尔加上0.5A,那么它被认为是束缚的。问题是我不知道如何计算每个原子的范德华力。因为在PDB中,原子名称就像CB1,CA等,而不是单个原子。例如,我知道瓦尔斯半径为N。我可以编写代码来计算原子之间的原子距离,但是我不能做范德华分量,这是必

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    我有一个名为50267.gff像GFF文件如下 #start gene g1 dog1 dog2 dog3 #protein sequence = [DDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDDD] #end gene g1 ### #start gene g2 cat1 cat2 cat3 #protein sequence = [C

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    每个文件我有一个PDB文件代表轨迹文件看起来像 REMARK GENERATED BY TRJCONV TITLE Protein in water t= 400.00000 REMARK THIS IS A SIMULATION BOX CRYST1 99.547 99.547 99.547 90.00 90.00 90.00 P 1 1 MODEL 1 ATOM 1 N P